Escribo para mí, para recordar algunas ideas que me interesan. Con el tiempo he descubierto que existe más o menos un nexo común en esas ideas. Aviso: Este blog no es un consultorio de salud.
En los progresos 2 y final tiene una prueba sobre un artículo de divulgación científica. En el siguiente enlace, tienen una entrada al blog en donde se encuentra la rúbrica, modelos de preguntas.
Primer artículo: https://www.investigacionyciencia.es/files/53601.pdf
¿Cómo a partir de este artículo podemos entender el siguiente?
¿Quién debe vacunarse frene a la Covid-19?
España vacunará a personal sanitario y ancianos primero
La rúbrica será la siguiente:
Tamaño del curso: 30 alumnos. Microbiología médica es una asignatura cuatrimestral de segundo año de medicina, tercer semestre. Los alumnos casi todos son de primera matrícula, es decir, no son repitientes.
Resultados de aprendizaje (RdA) del curso
1. Identificar y comparar los grupos microbianos de importancia médica humana, en base a su estructura, función y rasgos patogénicos haciendo uso de herramientas de microscopía, bioquímicas, serológicas y moleculares.
2. Conocer y entender los mecanismos fisiopatológicos para interpretar el desarrollo de las enfermedades infecciosas.
3. Entender y aplicar los conocimientos sobre microbiología médica en la resolución y análisis de problemas prácticos que imiten situaciones de la práctica médica real y como introducción en el manejo de pacientes con enfermedades infecciosas.
Sistema de evaluación
El curso se divide en tres progresos. El primer progreso significa el 25% de la nota, el segundo el 35% y el final el 40%. Cada progreso tiene una nota de teoría que vale el 70% de la nota del progreso y la nota de prácticas el 30%.
Dentro de las prácticas, en el primer progreso tenemos 5 temas. Cada tema tiene tres notas. El prerrequisito que se realiza los domingos a las 20:00, durante 5 minutos. La nota se multiplica por 0.05. El postrequisito se realiza el sábado después de la realización de la práctica, esta nota se tiene que multiplicar por 0.02. La semana después de la realización de la práctica tienen que entregar el informe. El informe tiene una nota que se multiplica por 0.02. Al final del progreso 1 tienen un examen. La nota del examen, que dura una hora y consta de 30 preguntas multiopción se multiplica por 0.56
Proalimentación
En cada tema estoy manejando el blog siguiendo el esquema de
dos sesiones de las prácticas. En la primera sesión hay una pequeña introducción
y se explica en qué consistirá la práctica. Por ejemplo, en el tema de infecciones
del tracto urogenital tenemos dos entradas en el blog:
Primera sesión: http://bacteriasactuaciencia.blogspot.com/2020/11/practica-infecciones-de-vias-urinarias.html
Segunda sesión: http://bacteriasactuaciencia.blogspot.com/2020/11/resultados-practica-infecciones-de-vias.html
En la entrada de la segunda sesión se muestran las
soluciones a las preguntas del cuestionario de la entrada de la primera sesión.
En esta entrada se muestran las fotografías de los resultados de la práctica.
El blog permite la verticalidad de contenidos empleando los enlaces. De esta
manera si en el texto se hace referencia a algún concepto, se enlaza este
concepto a una explicación en otra página, por ejemplo, wikipedia o a otra
entrada del blog, a través de los hipervínculos que generan los enlaces
El
empleo del blog, como sustituto de la presentación, además de manejar los
hipervínculos de manera más dinámica que las presentaciones, sirve para tener
en un solo lugar todos los materiales que se le proporcionan al alumno. Esto
tiene una importancia fundamental porque uno de los errores más frecuentes que
cometemos los profesores utilizando las plataformas digitales es MATARLOS A
PDFs y VIDEOS. Se añaden los recursos y se dejan en la plataforma para que el
alumno los consulte. Esto es un error porque el tiempo del alumno es limitado y
si no tiene conciencia de que ese material no va a necesitarlo para el examen
no lo va a consultar. De esa manera, plantear una pregunta en el blog y a
continuación poner un video, indicando en qué minuto se puede encontrar la
explicación a la pregunta, ahorra tiempo al estudiante y le hace ver la
relación entre ese video y su aprendizaje y posteriormente su éxito en las
evaluaciones. Como el blog se va a utilizar durante en distintas clases según
el número de paralelos que se tenga y en sucesivos semestres, es un material
que se corrige y se enriquece. Si añadimos un PDF y somos capaces de adjuntar
de qué página a qué página se encuentra el material relevante para resolver las
preguntas que proponemos ahorraremos tiempo y frustración a los estudiantes.
En los
progresos 2 y final tiene una prueba sobre un artículo de divulgación
científica. En el siguiente enlace, tienen una entrada al blog en donde se
encuentra la rúbrica, modelos de preguntas.
Primer artículo: https://www.investigacionyciencia.es/files/53601.pdf
Las calificaciones se han generado en consenso con los demás profesores de la asignatura. Se siguen las recomendaciones de no darle más del 50% del peso de la nota final a una sola evaluación.
Los RdAs de la asignatura han sido faro, guía e inspiración para la redacción de las preguntas. Las rubricas en el caso de las evaluaciones escritas son la resolución de los problemas del blog. En el caso del examen de progreso consta de 30 preguntas multiopción de un banco de preguntas de más 200 preguntas. Las preguntas tienen acceso a la retroalimentación al acabar el examen. La retroalimentación de las pruebas se hace presencialmente en pequeños grupos durante las tutorías (es una excusa fantástica para que usen las tutorías). Aprovecho esos momentos para felicitarlos por sus aciertos y también para subrayar, a veces escenificando, el horror que suponen algunas contestaciones.
Lo que
he aprendido dando clases en mis últimos años me reafirma en que las clases
invertidas son un excelente modelo educativo. El énfasis en crear grupos de
trabajo con los alumnos para que resuelvan problemas y fomentar la interacción
profesor-alumnos es el camino. ¿Por qué? Porque hay que evitar dar contenidos
que se vayan por el sumidero de la ducha después del examen. Si conseguimos que
el alumno razone y descubra la lógica de cualquier mecanismo biológico este
tipo de logro le acompañará toda la vida.
Enlaces:
Broiler Farms and Carcasses Are an Important Reservoir of
Multi-Drug Resistant Escherichia coli in Ecuador. 2020. Ortega-Paredes, D, de
Janon S, Villavicencio F, Jaramillo Ruales K, De La Torre, K, Villacís, JE, Wagenaar,
JA, Matheu J, Bravo-Vallejo C, Fernández-Moreira E and Vinueza-Burgos, C. Frontiers
in Veterinary Science. 7:979. https://doi.org/10.3389/fvets.2020.547843
Se sabe que bacterias nutricionalmente deficientes o auxotroficas causan dificultades en su aislamiento, identificación, o antibiograma como resultado de su dependencia de varios factores de crecimiento para lograr una morfología colonial y tasa de crecimiento normales. Estas bacterias incluyen estreptococos dependiente de piridoxal; Staphylococcus aureus dependiente de hemina, tiamina, pentotenato o menaquinona; E. coli, Proteus mirabilis; Salmonella typhimurium, y Streptococcus pneumoniae dependiente de timina. También, microorganismos dependiente de cisteina, tales como E. coli y Klebsiella pneumoniae, se han notificado como patógenos ocasionales del tracto urinario.
Aislamientos de Escherichia coli dependientes de cisteína asociados con la infección del tracto urinario son ahora bien reconocidos. Medios suplementados con cisteína han sido especialmente formulado para detectar estas cepas. Las cepas de la familia Enterobacteriaceae que son auxotroficas para cisteína debido a defectos en la asimilación de los sulfatos representan alrededor del 1,5% de los aislamientos significativos de infecciones de las vías urinarias, y también en ocasiones aisladas desde otros sitios corporales. Ciertos componentes de peptona de los medios bacteriológicos son deficientes en cisteína o de su producto de la oxidación, cistina, y en consecuencia el crecimiento de las cepas que son auxótrofas para estos aminoácidos es subóptima, causando problemas en su aislamiento, identificación, y las pruebas de sensibilidad. Estos microorganismos crecen pobremente en los medios de aislamiento y forman las llamadas "colonias enanas" ("dwarf colonies").
Las multinacionales no tienen bandera. Dicen. Pero si que la tienen. Allá donde tengan la sede principal, que es donde vive el príncipe, es decir, los accionistas mayoritario, los dueños del negocio, será donde tengan su bandera ¿Qué significa esto? que una multinacional no va a tratar igual a los clientes de su país de origen que a los de otros países. En otras palabras: ¡Primero ellos!
Por ese motivo, es esencial que los países latinoamericanos cuenten con su propia industria farmacéutica, para no ser los últimos en llegar a las vacunas
El tracto respiratorio se extiende desde las fosas nasales hasta los alvéolos pulmonares, está
habitado por diversas comunidades bacterianas.
Basándonos en la secuencia del gen 16SrRNA, los estreptococos se clasifican en 5 grandes grupos:
piógeno, mitis, angiosus, salivarus y bovis
Grupo piógeno
En el grupo piogénico, basándonos en el tamaño grande de la colonia, en la reacción hemolítica en
placas de sangre y en la detección de antígeno de grupo de Lancefield, es fácil identificar los e
streptococos betahemolíticos más comunes: S. pyogenes (grupo A) y S. agalactiae (grupo B)
S. pyogenes
S. pyogenes no presenta grandes problemas en su identificación. Se trata de colonias betahemolíticas,
que generalmente son sensibles a la bacitracina. S. pyogenes. Inhalación de partículas de enfermos y
portadores (humanos, perros y otros animales de compañía). Se diseminan por tos, estornudos, comida
y bebida contaminadas. Algunas cepas de S. pyogenes pueden estar infectadas con fagos (producen
toxina speA ) y producir fiebre escarlatina.
S. agalactiae
Existen varios medios de cultivo selectivos para la detección de S. agalactiae, recomendados para el
cribado de colonización por estreptococos del grupo B en mujeres embarazadas. El medio Granada 8 es
de interpretación sencilla y tiene una sensibilidad y especificidad elevadas. Se basa en la detección del
pigmento carotenoide que expresa la mayoría de los estreptococos de este grupo. El crecimiento de
colonias de color naranja, tras incubación en anaerobiosis, nos indica la presencia de S. agalactiae. Hay
que tener en cuenta que, aproximadamente, un 5% de los aislamientos suelen ser cepas no hemolíticas y
no pigmentadas, por lo que no serían detectadas con este medio.
Grupo mitis
S. pneumoniae
Las colonias de neumococo son características, producen alfahemólisis (por peróxido de hidrógeno) y,
si se prolonga algo la incubación de las placas, el centro de las colonias aparece ligeramente deprimido
como resultado de la autólisis
.
Objetivo de la práctica
La práctica cubre desde la obtención de una muestra de calidad (exudado faríngeo y nasal),
transporte, procesamiento hasta el reporte e interpretación de resultados (fases preanalítica,
analítica y post analítica).
Aparatos, equipos e instrumentos: microscopio óptico, mechero Bunsen, incubador 37º e incubador 37º
C, 5%-7% CO2
3. En una segunda caja bipetri con agar sangre etiquetar en la base “S. pyogenes”. En una
mitad etiquetar “optoquina” y en la segunda mitad “bacitracina”.
3.1. Repetir el proceso con S. pneumoniae en una tercera caja bipetri.
4. Realizar técnica de cultivo en “césped” en la caja de S. pneumoniae y en la de S. pyogenes.
4.1. Sumergir un hisopo estéril en la suspensión bacteriana.
4.2. Eliminar el excedente presionando el hisopo contra las paredes del tubo antes de
retirarlo.
4.3. Pasar el hisopo por el agar sangre realizando un zigzag muy cerrado. Girar 90° y volver
a realizar el procedimiento.
5. Colocar los discos de antibióticos en sus respectivas mitades.
5.1. Calentar la punta de las pinzas al rojo vivo y dejar enfriar.
5.2. Tomar con cuidado un disco de optoquina y colocarlo en la mitad del agar.
5.3. Calentar la punta de las pinzas al rojo vivo y dejar enfriar.
5.4. Tomar con cuidado un disco de bacitracina y colocarlo la mitad del agar.
5.5. Repetir el proceso con la otra caja bipetri con cultivo en césped.
6.1. Etiquetar la base de una caja Petri con agar sangre con “Nasofaríngeo” y “Orofaríngeo”.
6.2. Tomar la muestra de acuerdo a la técnica explicada
Exudado faríngeo.
El cultivo faríngeo es el método estándar para documentar la presencia de S. pyogenes en la
faringe, esta prueba alcanza una sensibilidad del 90 a 95%.
Condiciones previas del paciente
• El paciente no debe haber recibido antibióticos en los últimos 8 días, previos a la obtención de
la muestra.
• El paciente debe acudir en ayunas al laboratorio.
• Debe cepillarse los dientes y no practicar gargarismo.
Procedimiento
1. Inspección de la faringe: ubicar al paciente en una posición cómoda y con buena iluminación,
deprimir la lengua con el bajalenguas, visualizar la fosa amigdalina y faringe en busca de
exudado posterior, presencia de pseudomembrana o placas
2. Indicar al paciente que abra la boca y que pronuncie un largo “ah”, el cual sirve para elevar
la úvula y evitar las náuseas.
3. Introducir el hisopo y frotar enérgicamente ambas amígdalas y la pared posterior de la faringe
con movimientos de barrido.
4. Retirar el hisopo cuidando de no tocar las paredes laterales de orofaringe, úvula, lengua,
encías y dientes.
5. Extender la muestra con suaves movimientos sobre la superficie de los portaobjetos para
realizar los frotis que serán teñidos al Gram.
6. Obtener un segundo hisopado de fauces para la siembra en Agar Sangre de carnero, Girar
la cabeza del hisopo y presionar ligeramente contra una zona pequeña del extremo de la
caja Petri.
7. Estriar por agotamiento con un asa previamente esterilizada para obtener colonias aisladas.
8. Incubar el agar sangre a 37°C, en condiciones de 5-7% CO2, por 24-72 horas.
Observación: En caso de ser necesario, la muestra se podrá transportar en medio de Stuart o
Amies, realizando el cultivo de la misma en el menor tiempo posible (menos de 2 horas).
Interpretación del examen directo
Gram: describir los hallazgos de células inflamatorias, la morfología y disposición bacteriana
presente (ejemplo: cocos Gram positivos en cadena, bacilos Gram negativos fusiformes) así
mismo reportar la presencia de células levaduriformes, hifas y pseudohifas.
SESIÓN 2
1. Bipetri estriada con S. pneumoniae y S. pyogenes:
1.1. Observar las características morfológicas de las colonias.
1.2. Hemolisis de cada una de las cepas.
1.3. Realizar la prueba de catalasa de ambas cepas bacterianas.
1.4. Reportar resultados en la Tabla de características microbiológicas observadas.
2. Bipetris con discos antibióticos: interpretar resistencia y susceptibilidad a los antibióticos
optoquina y bacitracina.
2.1. Medir diámetros de los halos (si los hay).
2.2. Registrar los resultados y su interpretación (Resistente o Susceptible) en la Tabla de
respuesta a antibióticos.
3. Muestras nasofaríngea y orofaríngea:
3.1. Identificar las características morfológicas de cada una de las colonias aisladas
(escoger mínimo dos morfologías diferentes)
3.2. Realizar tinción Gram.
3.3. Realizar prueba de catalasa.
3.4. Con los datos obtenidos identifique de manera presuntiva el género y la posible especie
de las bacterias aisladas.
3.5. Registrar resultados en la Tabla de características morfológicas y microbiológicas de
muestras nasofaríngeas y orofaríngeas.
Datos a ser registrados y el método de análisis y de presentación de resultados.
Género Streptococcus: una revisión práctica para el laboratorio de microbiología
Cuestionario:
PREGUNTA 1: ¿Mediante qué mecanismo S. pneumoniae lisa los eritrocitos?
PREGUNTA 2: ¿La clasificación de Lancefield en qué está basada?
PREGUNTA 3: ¿Por qué el patrón de hemólisis es útil para clasificar estreptococos?
PREGUNTA 4: En referencia a las características generales de los Streptococcus. Señale la opción
correcta. Puede haber más de una opción correcta o ninguna. Justifique cuando
una opción es incorrecta:
a) Son cocos Gram-positivos agrupados en cadena.
b) Tienen crecimiento rápido y forman colonias al cabo de 24-36 horas de cultivo.
c) Sólo pueden oxidar los azúcares, no pueden fermentarlos.
d) Son bacterias con mínimos requerimientos nutricionales y pueden crecer en medios pobres.
e) Dan reacción positiva a la prueba de la catalasa.
f) Se las denomina fastidiosas porque las cepas con importancia médica desarrollan más
lentamente.
g) Una de las especies beta hemolíticas con mayor importancia médica es S. pneumoniae.
a) Correcta, en cadenas y en diplococos
b) Correcto. Aunque pueden aparecer cultivos tras 18 horas
c) Correcto, los bacilos son fermentadores de lactosa
d) Verdadero, se las puede cultivar en medio solidos
e) Falso. Todas las especies de Streptococcus son catalasa negativa y Staphylococcus son catalasa
positivo
f) Verdadero, S. pneumonie puede ser considerada una bacteria fastidiosa ya que tiene requerimientos
nutricionales específicos
g) La más importante Beta hemolíticos es Streptoccocus pneumoniae
PREGUNTA 5: ¿Por qué el patrón de hemólisis es útil para clasificar estreptococos?
Resultado: Porque nos permite dividir a los Streptococcus según su patrón de lisis de los eritrocitos.
Existen Streptococcus alfa hemolíticas que producen una hemólisis incompleta, existen Beta
hemolíticos que producen una hemólisis completa y los gamma hemolíticos que no producen
hemólisis,
PREGUNTA 6: En referencia a las características generales de los Streptococcus pyogenes. En todas
los casos señale la opción CORRECTA. Puede haber más de una opción correcta o ninguna. Justifique
cuando una opción es incorrecta:
a) La proteína M y las exotoxinas SpeA, SpeB y SpeC caracterizan a las cepas más patógenas.
b) Es la causa más frecuente de faringitis en niños y adolescentes de la comunidad.
c) La escarlatina es una manifestación cutánea causada por una exotoxina pirogénica.
d) Las cepas invasivas que producen SpeA pueden causar shock tóxico.
e) Causan infecciones de piel localizadas, sin diseminación a tejidos contiguos.
f) Es sensible a la bacitracina, lo que permite un reconocimiento temprano en cultivo.
g) Causa infecciones piógenas.
PREGUNTA 7: En referencia a las características generales de los Streptococcus pneumoniae. En
todas los casos señale la opción CORRECTA. Puede haber más de una opción correcta o ninguna.
Justifique cuando una opción es incorrecta:
a) Puede integrar la microbiota normal nasofaríngea e infecta a individuos de la comunidad.
b) Su reservorio exclusivo es el humano.
c) Desarrolla en agar sangre con producción de hemólisis completa.
d) La ausencia de cápsula permite su diseminación sanguínea.
e) Existen solo 2 serotipos capsulares, A y B.