¿Pueden caminar los hongos?
La respuesta es ¡Si!, utilizando un exoesqueleto. Puede ser de una araña, de una horminga...
¿Pueden caminar los hongos?
La respuesta es ¡Si!, utilizando un exoesqueleto. Puede ser de una araña, de una horminga...
El encuentro de un hongo Rhizopus (negro) con un hongo Penicillium (verde)
El hongo negro crece más rápido que el verde y lo va rodeando. El hongo verde se defiende impidiendo que el hongo negro le pase por encima.
Los mohos zigomicetos son aquéllos que producen esporas mediante reproducción sexual. Se conocen aproximadamente 1.060 especies. Mayoritariamente viven en el suelo, o en órganos vegetales en proceso de descomposición o en substratos de origen animal. Algunos son parásitos de plantas, insectos y pequeños animales, mientras que otros viven en relación simbiótica con las plantas.
Las esporas sexuales se forman en una estructura esférica llamada zigoesporangio (de ahí el nombre de esta fila). Un zigosporangio contiene múltiples núcleos haploides de los dos padres dentro de una sola célula. Los núcleos haploides se fusionan para formar los núcleos diploides, que son equivalentes a los zigotos. La célula que contiene los núcleos es llamada zigospora
Su reproducción también puede ser asexual, para la que desarrollan unas estructuras llamadas esporangios localizadas al final de hifas aéreas de crecimiento vertical (esporangióforos) conteniendo millares de esporas asexuales.
En productos alimenticios, los mohos zigomicetos más conocidos pertenecen al orden de los mucorales, como por ejemplo Rhizopus stolonifer, conocido también como moho negro del pan. Las especies del género Rhizopus son causantes de podredumbre en varios alimentos de origen vegetal como tomates, fresas, frutas de pepita y de hueso.
La mayoría de los hongos son saprófitos, esto es, obtienen su energía descomponiendo materia orgánica. Sin embargo, algunos de ellos son patógenos para el ser humano. Para combatir a los hongos patógenos utilizamos los antifúngicos. Cada vez que ejercemos una presión selectiva contra una población genéticamente variable, vamos a seleccionar a aquellos individuos que tienen un mejor desempeño, y ya sabemos que en biología mejor desempeño significa poder dejar más descendencia a la siguiente generación. Los descencientes de los hongos que presentan resistencia van a experimentar una expansión clonal para ocupar el nicho ecológico de los que fueron eliminados por el antifúngico. Este proceso de aparición de individuos resistentes a los antifúngicos sigue el patrón conocido de VARIABILIDAD, SELECCIÓN Y EXPANSIÓN CLONAL.
El problema de la resistencia a los antifúngicos (artículo científico)
Molecular mechanisms governing antifungal drug resistance (artículo de revisión en Nature)
Fig. 1. a Las equinocandinas funcionan al inhibir la (1,3)-β-D-glucano sintasa, alterando la integridad de la pared celular y causando estrés severo en la pared celular. La resistencia a la equinocandina está mediada principalmente por mutaciones en el gen objetivo del fármaco, FKS1, en Candida, Cryptococcus y Aspergillus. Para C. glabrata, las mutaciones ocurren tanto en FKS1 como en su parálogo FKS2. Los factores celulares que permiten las respuestas al estrés inducido por equinocandina incluyen la chaperona molecular Hsp90, varias proteínas cliente de Hsp90 y genes que regulan la señalización de recuperación de la pared celular (p. ej., regulación positiva compensatoria de la síntesis de quitina). b Los azoles actúan sobre la membrana celular fúngica a través de la inhibición de la lanosterol 14-α-desmetilasa (Erg11), que bloquea la biosíntesis de ergosterol y da como resultado la acumulación de un intermediario de esterol tóxico (14-α-metil-3,6-diol) producido por Erg3. La resistencia a los azoles puede surgir a través de mutaciones en el objetivo del fármaco (ERG11) o sobreexpresión del objetivo. Las mutaciones de pérdida de función en ERG3 también pueden conferir resistencia a los azoles al bloquear la acumulación de esteroles tóxicos y este mecanismo depende de Hsp90 y sus proteínas clientes. El flujo de salida también es un determinante importante de la resistencia a los azoles e implica la regulación al alza de los transportadores ABC y MF. Las aneuploidías, como la duplicación del brazo izquierdo del cromosoma 5 (denominado isocromosoma (i5(L))) pueden aumentar la dosis del azol objetivo Erg11 y las bombas de expulsión. c El fármaco poliénico anfotericina B forma agregados extramembranosos que extraen el ergosterol de las membranas de las células fúngicas, actuando como una “esponja” de esteroles. Si bien la resistencia sigue siendo extremadamente rara, se puede adquirir a través de mutaciones en los genes de biosíntesis de ergosterol que dan como resultado el agotamiento del ergosterol y la acumulación de esteroles alternativos. Al igual que con la resistencia a otros antifúngicos, la resistencia a la anfotericina B también depende de las respuestas de estrés dependientes de Hsp90. Fuente
PREGUNTA 1: ¿En que se diferencia un antifúngico de un antibiótico?
a En que tienen nombres diferentes pero son antimicrobianos, es decir, ambos atacan microbiosPREGUNTA 2: a la hora de buscar nuevos antifúngicos y nuevos antibióticos ¿Cuáles son más difíciles de obtener y por qué?
a Es más difícil desarrollar antifúngicos debido a que tienen menos dianas molecularesLas educadoras Jaralee Metcalf y Dayna Robertson del Hospital Infantil C.S. Mott, de la Universidad de Michigan, que es el hospital en donde nacieron mis dos hijos, en Ann Arbor, han realizado un experimento How Clean Are Your Hands? que nos permite observar el efecto que tiene el lavarse las manos sobre una rebanada de pan.
El experimento utiliza rebanadas de pan para ilustrar la acumulación de gérmenes, y las profesoras usaron cinco piezas en representación de diferentes grados de aseo. La rebanada que no se tocó con las manos y que sirvió como control quedó intacta. Las otras piezas fueron tocadas por todos los alumnos en las siguientes condiciones: con las manos sin lavar, sin lavar pero con gel antibacterial, y con las manos lavadas con agua caliente y jabón. Además, las profesoras frotaron otro pedazo de pan en las computadoras de la clase. Todas las rebanadas se colocaron en bolsas de plástico con cierre hermético, y las dejaron por un par de días para ver cómo reaccionaban.
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| Fig. A Las hormigas en su huerto de hongos, observad los puntos blancos en el torax de las hormigas. Esas son las colonias de Actinobacterias. Fig. B Los puntos blancos en el cuerpo y cabeza de la hormiga son bacterias productoras de productos antifúngicos. Fuente |
Picos eléctricos agrupados en hongos
El Dr Adamatzky insertó microlectrodos en las hifas de cuatro especies de hongos y analizó los patrones de picos eléctricos que se producían cuando el hongo se encontraba con una fuente de alimento.
Las hifas, que son cadenas de células en forma de tubo, funcionarían de esa manera como una neurona transmitiendo electricidad de un extremo al otro. Observó que estos picos eléctricos a menudo se agrupaban en secuencias que se asemejaban a vocabularios de hasta 50 palabras. De hecho, descubrió que la distribución de estas "longitudes de palabras fúngicas" coincidía estrechamente con la de los idiomas humanos.
Los picos eléctricos después de 5 días de registro son similares a un código de barras (a) C. milataris, (b) F. velutipes
El código Morse se basa en que la longitud y tiempo entre los puntos y rayas se controlan cuando se presiona una tecla, entonces la señal está "on" (encendida) y "off" (apagada) cuando se suelta. Si la longitud de on tiene dos tiempos: corta para representar un punto y larga para representar una raya, entonces podemos crear un alfabeto de la siguiente manera:
Baja modesto que sube Adamatzky
De ahí a decir, como propone en su artículo, que ha descubierto un lenguaje fúngico media un grandísimo trecho. Otro tipo de científico sería mucho más cauto y se ceñiría exclusivamente a lo que ha descubierto: que existe una comunicación con picos eléctricos y que presentan una estructura modular. De ahí a decir que ha descubierto un lenguaje solo se explica desde el deseo que tienen las personas de ciertos grupos culturales, étnicos o religiosos de ¡Querer a toda costa iluminar a los gentiles!. En el fondo, es un mecanismo muy curioso que merece la pena que sea investigado: hablar yo para que no hables tu. Este aforismo sigue también una estructura darwiniana: si me reproduzco permanezco y aumento mi frecuencia en la población de discursos. No solamente estaríamos impelidos por nuestra biología a dejar el máximo de descendencia sino que a nivel cultural también, nuestra propia cultura, trataría de imponerse a la de los demás.
Ahora bien, aunque las "conclusiones" son precipitadas y ambiciosas hay que reconocer que es una idea muy interesante y osada. El lenguaje sirve para optimizar los recursos y si comunicarnos sirve para dejar más descendencia ese "descubrimiento" va a seguir evolucionando. Tiene lógica evolutiva. De igual manera, hay personas que hablan por que tienen algo que decir, y los demás lo que mejor que podemos hacer es quedarnos callados, especialmente porque si adoptamos una estrategia para defendernos de ese discurso que es mejor que nosotros, esa estrategia siempre será vil y despreciable.
Se inyecta un té de hongos alucinógenos, le crecen hongos en las venas y se salva
Los microorganismos fúngicos presentan una diferencia biológica notable con bacterias y parásitos. La micología médica se enfoca en el estudio de los micromicetos dentro de los cuales las estructuras básicas en el sentido microbiológico nos interesan las levaduras, los filamentos (que se conjunto forma un micelio) y los hongos dimórficos. Los cuales pueden infectar a los humanos, con una prevalencia e incidencia menor en comparación a otros microorganismos, sin embargo, las infecciones micótica se asocian a una mortalidad notablemente más alta.
Los blastoconidios son las estructuras principales de una levadura
Las hifas representas a los hongos filamentosos,
Una vez que el médico ha identificado un cuadro clínico compatible con una infección micótica se enviarán al laboratorio muestras clínicas representativas según el sitio de infección, donde deberán realizarse tinciones y cultivos para la identificación del patógeno fúngico productor de la enfermedad. Una vez identificado el hongo se proceden a pruebas fenotípicas para la confirmación de género y especie, por ejemplo, el tubo germinal que será abordado en esta práctica.
Los hongos pueden tener reproducción sexual, asexual y parasexual como es el caso de Aspergillus.
Objetivos de la práctica
1. Identificar las formas biológicas básicas de un hongo (levaduras y mohos).
2. Conocer las tinciones y medios de cultivos más usados en micología médica.
3. Identificar cepas de las especies de Candida más frecuentes en micología médica.
Alcance
Esta práctica cubre desde el reconocimiento por microscopia de las estructuras fúngicas hasta la asociación con el cultivo de la colonia.
Previo a la realización de la práctica el estudiante deberá:
Revisar la guía de la práctica y recursos que se encuentran en aula virtual.
Conocer la biología de los hongos (capítulo 57, Murray, Microbiología Médica, 8ed).
Diagnostico en micología médica (capítulo 60, Murray, Microbiología Médica, 8ed).
Aparatos, equipos e instrumentos
Materiales y reactivos
Recursos adicionales
Cultivos micóticos en agar Sabouraud de Candida albicans, Candida krusei
Cultivos micóticos en agar Sabouraud de Aspergillus spp. y Penicillium spp
Cultivo micótico en agar cromogénico Candida de C. albicans y C. krusei
Métodos de diagnóstico en microbiología
Revista iberoamericana diagnóstico microscópico micosis pdf
Revista iberoamericana identificación de levaduras
Diagnósticomicrobiológico de lasmicosis y estudios desensibilidad a losantifúngicos
Descripción del procedimiento
SESIÓN 1
Identificar morfología de las colonias de levaduras Candida albicans y Candida krusei (forma, borde, elevación, humedad, etc.).
Tubo germinativo
Permite diferenciar las especies de Candida albicans de las no albicans.
1. Se toma una pequeña porción de la colonia con un asa de platino esterilizada y se siembra en 0,5 ml de suero humano o de conejo.
2. Incuba a 37ºC por 2 horas.
3. Colocar 2 ó 3 gotas de la suspensión en una lámina portaobjeto y cubrir con lámina cubreobjetos y observar al microscopio con objetivo de 40X.
Interpretación: La prueba es positiva al visualizar una estructura elongada que se origina a partir de la levadura.

Hidróxido potásico (KOH)
Es el medio de montaje de las muestras clínicas más universalmente aceptado. Permite clarificar todo tipo de muestras clínicas con abundantes células y restos celulares y observar la morfología y la pigmentación fúngica.
1. Se deposita el material a examinar en una placa portaobjetos y se añade una gota de la solución de KOH, se homogeniza la suspensión y se coloca el cubreobjetos.
2. Tras un período de tiempo para permitir la clarificación de la muestra por el KOH, la preparación se examina a 10 x, 40x y 100x.
3. Si fuera necesario, puede calentarse suavemente.
Azul de Lactofenol
El estudio microscópico de los organismos levaduriformes o microorganismos relacionados (género Prototheca) se puede llevar a cabo mediante tinciones, ya sea tinción simple (azul de lactofenol) o tinción de Gram.
1. Se deposita el material a examinar en una placa portaobjetos y se añade una gota de azul de lactofenol, se homogeniza la suspensión y se coloca el cubreobjetos.
2. Después de 2 minutos se examina la muestra a 10x, 40x y 100x.
Microcultivo de hongos filamentosos
SESIÓN 2
1. Correlacionar en agar cromogénico para Candida las diferencias en el color de las colonias.
2. Observación de los resultados de siembra de tubo germinal.
3. Observación de placas con cultivos de hongos filamentosos y detallar su morfología de colonias.
4. Observación de láminas con extendidos de mohos para la visualización de hifas y cuerpos fructíferos.
Datos a ser registrados y el método de análisis y de presentación de resultados.
Los estudiantes deben complementar los resultados de la práctica con la siguiente información para su discusión en el informe:
Rutas y modos de dispersión de mohos y levaduras estudiadas en el laboratorio.
Patologías asociadas.
Importancia de la adecuada identificación microbiológica para la instauración de una terapia antifúngica adecuada.
Fármacos usados para el tratamiento y su modo de acción en las levaduras y mohos estudiados en el laboratorio.
La presencia del tubo germinativo permite diferenciar C. albicans de otras Candidas. Ojo, el 5% de las C. albicans no desarrollan tubo germinativo. En la fotografía se observan varios tubos germinativosEl diagnóstico de las micosis se pueden realizar mediante:
Observación de fluorescencia al aplicar luz UV (luz de Wood) directamente sobre las lesiones
Ejemplo de pitiriasis versicolor producida por Malassezia furfur. Se tratan con azoles tópicos. Estas lesiones cutáneas hipo/hiperpigmentadas con pérdida de producción de melanina (debido al ácido acelaico producido por la levadura).
Observación microscópica:
Tinta china sobre muestra de LCR
Cryptococcus neoformans produce una típica micosis oportunista en pacientes inmunodeprimidos. Se diagnostica después de su visualización de sus levaduras capsuladas obtenidas del líquido cefalorraquideo y teñidas con tinta china
Blanco de calco-fluor (requiere microscopio de fluorescencia)
Tinción argéntica
Tinción con azul de lactofenol
Penicillium spp en tinción con azul de lactofenol
Detección de Antígenos específicos
Cultivo en medios selectivos por ejemplo el agar Sabouraud-cloranfenicol, con o sin cicloheximida, un antibiótico que inhibe a los otros microorganismos saprófitos que pudieran crecer en el cultivo. En el caso concreto de Cryptococcus, ve inhibido su crecimiento por la cicloheximida, o lo que es lo mismo, actidiona, por lo que requerirá el agar Sabouraud-cloranfenicol exclusivamente.
Serología es poco utilizada, tan solo en algunas micosis sistémicas, por ejemplo de Histoplasma
Tipos de micosis